產品中心
PRODUCT CENTER
糖蛋白和抗體結合試劑盒（I）
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貨號 |
產品名稱 |
產品規格 |
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FD106 |
BcMag? 糖蛋白和抗體結合試劑盒（I） |
一個 |
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存儲條件 |
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2.5μm BcMag?酰肼基磁珠 |
4℃ |
150mg |
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10x結合緩沖器 |
4℃ |
10ml |
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氧化劑（NaIO4） |
4℃ |
100mg |
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5 x洗滌緩沖液 |
4℃ |
15ml |
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10xPBS |
4℃ |
5.0ml |
儲存：收到產品時，將試劑盒儲存在4oC。
在自然的條件下，大多數生物化合物不含羰基酮或醛。然而，蛋白質上其他類似的基團也可能有效地形成固定位點，該固定位點可以共價偶聯目標物質。并且遠離活性中心或結合區。糖復合物，如糖蛋白和糖脂，通常在相鄰碳原子上含有具有羥基的糖殘基。用高碘酸鈉氧化這些順式二醇就會產生可用作共價固定位點的醛基。
BcMag ? 糖蛋白和抗體結合試劑盒使用酰肼基活化磁珠和特定催化劑，與糖蛋白和抗體產生親和反應，這些糖蛋白和抗體的Fc部分通常有大量碳水化合物（糖基化）。本試劑盒通過氧化的碳水化合物基團，來固定糖基化蛋白（包括單克隆抗體），以產生可重復使用的親和基質。這種使用酰肼基團化學固定的抗體，具有抗原結合位不會受到阻礙的有點，和對抗體具有優良的純化能力。在含有催化劑的，簡單的非胺緩沖液中，完全偶聯只需要2至4小時。抗體和常見糖蛋白的偶聯效率通常大于85%，每毫克的酰肼基磁珠可以固定15μg至20μg蛋白。用穩定的糖蛋白或抗體制備的基質可以再生并重復使用至少五次，而不會明顯喪失結合能力。
BcMag ? 酰肼基磁珠是在表面連接有高密度酰肼官能團的均勻磁珠。酰肼基磁珠可通過糖基化位點可有效的對糖蛋白進行標記、固定或偶聯；這些位點通常（與大多數多克隆抗體一樣）遠離關鍵結合位點的結構部位，這樣就完美的保留了這些關鍵結合位點的功能。以這種選擇性地與靶向分子Fc部分的重鏈結合的方式偶聯抗體，有助于Fv區域末端盡可能最好地保存抗原結合活性。在pH 5至7條件下，酰肼基的載體和化合物將與氧化碳水化合物的羰基結合，從而產生腙鍵（圖1）。酰肼基磁珠結合較大的糖蛋白和糖脂，碳水化合物或其他配體。它的親水性表面基團保證了磁珠在實驗過程中，具有極低的非特異性吸附率、且有良好的分散性，并易于在各種緩沖液中處理。
工作流程
本款磁珠可以完美地作為親和樹脂進行親和純化，將分子、細胞和部分細胞提取物進行提煉純化。在與配體結合后，將磁珠添加到含有目標分子的樣品中，然后混合、孵育、洗滌和洗脫目標分子。
功能和優點。
· 特異性的固定反應------酰肼基活化磁珠僅會與，已被高碘酸鹽（例如唾液酸）輕度氧化的，含有糖基的純糖蛋白結合。
· 穩定的共價鍵，低水平的配體泄漏
· 維持抗體功能-----通過Fc區固定IgG，保留兩個抗原結合位點，均可用于靶目標的捕獲。
· 極低的非特異性結合率
· 極高的固定容量：15-20μg抗體/mg磁珠。
操作協議
提示
l 強烈建議在實驗過程中進行滴定優化，以確定每個實驗中應用的磁珠數量。該協議可以相應地放大和縮小。
l 應避免使用含有伯胺基團或糖類的Tris或其他緩沖液，因為它們會與預期的
偶聯反應物競爭結合磁珠。
所需耗材
1.磁力分離器（適用于手動操作）：根據實驗時生物樣品的體積，使用者可以選擇一下不同型號的磁力分離器：
BcMag? separator-2可以容納兩個單獨的1.5 ml離心管(Cat.# MS-01);
BcMag? separator-6可以容納六個單獨的1.5 ml離心管(Cat.# MS-02);
BcMag? separator-24可以容納24個單獨的1.5-2.0 ml離心管(Cat.# MS-03);
BcMag? separator-50可以容納一個單獨的50 ml離心管，一個15ml的離心管，以及四個1.5ml離心管(Cat.# MS-04);
BcMag? separator-96 可以配合96 ELISA板使用 (Cat.#MS-05).
2.Coupling Buffer: 0.1 M 磷酸鈉, pH 7.0
3.氧化劑: Sodium meta-Periodate (NaIO4) (Sigma, Cat# S1878)
4.Washing Buffer: 1M NaCl
5.PBS
6. 2.5 μm BcMag? 酰肼基磁珠
配體的偶聯反應
A. 磁珠的準備
1.稱取30 mg磁珠，并將其加入到1.5 ml離心管中。
2.加入1毫升coupling buffer，并通過渦旋或移液器吹吸方式將磁珠充分懸浮。
3.將試管放在磁力分離器上1-3分鐘。當磁珠完全沉淀時，去除上清液。
4.將清洗的磁珠準備進行偶聯反應。
B.糖蛋白或其他配體的氧化
注意：該反應對光敏感，應在黑暗中進行。
1.將0.5-10 mg糖蛋白或者其他配體溶解或稀釋于1 ml Coupling Buffer中。（注：如果蛋白質或者其他配體已經懸浮在其他緩沖液中，則通過透析脫鹽柱進行緩沖液交換。）
2.將蛋白質其他配體溶液添加到含有2 mg高碘酸鈉（最終濃度為10 mM）的棕色小瓶中。輕輕旋轉以溶解氧化劑。
3.在室溫下，將樣品在黑暗中緩慢旋轉孵育45分鐘。
C.偶聯反應
1. 將氧化后的蛋白質或其他配體溶液添加到步驟A4制備的磁珠中，并通過旋轉或移液器吹吸方式充分混合。
提示：偶聯效率取決于目標糖蛋白或其他配體的結構和大小。用戶應根據經驗優化蛋白質與磁珠的比例。
2. 在室溫下，在黑暗中孵育反應過夜，過程中保持充分混合
3. 將試管放在磁力分離器上1-3分鐘。當磁珠完全沉淀時，去除上清液。取下試管，用5ml的Coupling buffer通過渦懸或者吹吸重新懸浮磁珠。
4. 重復步驟3三次。
5. 用含有0.1%疊氮化物（w/v）的PBS緩沖液重新懸浮磁珠至所需濃度，在4°C下儲存，直至使用。不要冷凍保存。
D、常見親和純化過程
提示：
l 該方案是一個通用的親和純化發法。因為沒有兩種蛋白質是完全相同的，所以不可能為所有的蛋白質純化設計一個通用的協議。為了獲得最佳結果，每個用戶必須確定純化單個目標蛋白的最佳工作條件。
l 強烈建議根據粗樣品中目標蛋白質的含量，進行滴定，以優化每個單獨實驗中使用的磁珠數量。使用過多的磁珠
將導致較高的背景，而使用過少的磁珠將導致較低的產量。每毫克磁珠通常可與10-20μg靶蛋白結合。
1.將適量的珠子轉移到離心管中。將管放在磁力分離器上1-3分鐘。當磁珠完全沉淀時，去除上清液。
2. 取下試管，加入5倍磁珠溶液體積的PBS緩沖液，通過震蕩重新懸浮磁珠，渦旋30
秒。將試管至于室溫環境1-3分鐘，再將管放在磁力分離器上1-3分鐘。當磁珠完全沉淀時，去除上清液。
3.重復步驟2 兩次。
4. 向含有目標蛋白質的粗樣品中添加洗滌過的磁珠，并在室溫或所需溫度下溫浴1-2小時（溫度越低，培養時間越長）。
提示：強烈建議進行滴定實驗以優化培養時間。因為孵化的時間太長可能會導致很高的背景。
5. 用5倍磁珠體積的PBS緩沖液或1M NaCl徹底清洗磁珠，直到280nm處洗脫液的吸光度接近背景水平（OD 280<0.05）。
提示：添加更高濃度的鹽、非離子洗滌劑和還原劑也可能會降低非特異性背景。例如，向洗滌緩沖液中添加NaCl（濃度為1-1.5 M）、0.1-0.5%的非離子洗滌劑，如Triton X-100或Tween-20。
6. 通過適當的方法，如低pH（2-4）、高pH（10-12）、高鹽、高溫、親和洗脫或SDS-PAGE加載緩沖液中煮沸，洗脫目標蛋白。
