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低表達量His標簽蛋白質純化試劑盒

低表達量His標簽蛋白質純化試劑盒

低表達量His蛋白質純化試劑盒。

貨號

產品名稱

產品規格



MHQ101

BcMag公司? 低表達His標簽蛋白純化試劑盒

5毫升



MHQ102

BcMag公司? 低表達His標簽蛋白純化試劑盒

10毫升


 

產品屬性

組成

表面連接 Ni2+磁珠

力大小

~60 EMU/g

磁化類型

超順磁性

穩定性

適用于pH 4-11,100%乙醇,100%甲醇,8M尿素,6M鹽酸胍, 20 mM DTT, 20mM EDTA

濃度

100 mg/ml (1% NiSO4.6H2O)  

結合能力

>2mg His-標簽 GFP /ml 磁珠

儲存

儲存 4°C

 

運輸條件常溫運輸

儲存條件: 在4oC儲存試劑盒。

 

BcMag ? 低表達量His的蛋白質純化試劑盒使用還原試劑兼容的磁珠純化His標記的蛋白質,這些蛋白質可能存在有非特異性結合問題,例如低表達蛋白質或靶蛋白與細胞蛋白質結合(圖1)。磁珠是使用納米級超順磁性氧化鐵作為核心制造的,并完全由高純度二氧化硅外殼包裹,確保氧化鐵沒有浸出問題。我們專有的螯合劑固定在其表面上,并與Ni2+離子牢固結合,從而對還原劑產生高抗性。由于二氧化硅材料產生的側鏈比其他固體基質如瓊脂糖要少很多,因此純惰性二氧化硅產生的非特異性結合較少。此外,磁珠結合了BcMag ? 低表達His標記的蛋白質純化試劑盒的所有優點(低成本,簡單,高特異性和容量)和磁性,可進行有效的手動或自動快速高通量純化。

 

 

 

 

 

 

工作流程(圖2

磁珠進行純化很簡單(圖2)。將磁珠與樣品混合,并連續旋轉孵育足夠的時間。在混合過程中,磁珠保持懸浮在樣品溶液中,使目標分子與固定化配體相互作用。孵育后,收集磁珠并使用磁架將其與樣品分離。然后用咪唑洗脫超純His標記的重組蛋白。

 

 

 

 

 

 

 

 

優勢及特點

l 磁珠表現出比多孔載體更少的非特異性結合率。

穩定的共價鍵,最的配體泄漏

在含有高達20mM EDTA20mM還原試劑的情況下,磁珠不會發生鎳離子浸出現象。

l 與細胞培養基中過量表達、或分泌蛋白的純化兼容。

l 極高的蛋白純度

l 性價比高:無需使用純化柱、過濾器、有機試劑或進行重復移液。

l 高通量:與許多不同的自動化液體處理系統兼容。

產品應用

研究蛋白質結構和功能

l X射線晶體學重組蛋白的制備

是研究蛋白質,與蛋白質或DNA相互作用的理想選擇材料

l 在免疫研究中,提高抗體與對應蛋白的結合和能力

即使使用粗細胞裂解液也能有效篩選表達蛋白質

His蛋白的微純化

 

背景信息

背景信息

多聚組氨酸標簽,也稱為6xHis標簽,和His標簽,是從各種表達系統(包括細菌、酵母、植物細胞和哺乳動物細胞系統)中純化重組蛋白的通用工具。該標簽是位于重組蛋白的NC末端的包含六個或更多個連續組氨酸的殘基。由于這個氨基酸鏈體積非常小,His標簽具有幾個獨特的特性,包括較少的免疫原性、親水性以及可在天然和變性條件下都可發揮作用的用途廣泛性。此外,不需要從重組蛋白上切割標簽,因為它不會干擾其融合蛋白的結構和功能。His標簽的純化原理基于固定化金屬離子親和層析(IMAC)。

固定化金屬離子親和層析(IMAC)是一種快速的親和純化層析技術,是基于攜帶his標簽的重組蛋白質對Ni2+Co2+的親和力從而達到分離目的,而Ni2+Co2+則被結合固定到固相基質表面,例如珠狀瓊脂糖或純化柱。在pH 7-8時,His標簽蛋白將與Ni2+Co2+結合。His標簽重組蛋白質的結合反應受到各種自變量的影響,如pH、溫度、鹽類型、鹽濃度、固定化的金屬和配體密度以及蛋白質大小??赏ㄟ^降低pH梯度、增加咪唑濃度或在緩沖液中加入EDTA螯合劑來洗脫結合的蛋白質。該技術是快速、直接捕獲和純化帶標簽重組蛋白的,高性價比的理想工具。

非特異性結合是從各種表達系統中純化his標簽蛋白的潛在問題,尤其是從低表達的重組his標簽蛋白或與其他細胞蛋白相互作用的高表達蛋白中純化his標簽蛋白。許多因素可能導致非特異性結合。其中,低表達蛋白或與內源蛋白結合的標記蛋白可能導致嚴重的非特異性結合。His的蛋白質與IMAC的金屬離子的結合取決于電荷。當樹脂的his結合位點由于其低豐度而僅部分結合目標蛋白質時,會發生非特異性結合。其余的結合位點與其他帶輕微電荷的蛋白質(如富含組氨酸的蛋白質)發生非特異性相互作用,導致純化出的蛋白出現雜質。許多證據表明,在結合和洗滌緩沖液中還原試劑和非離子洗滌劑可以顯著降低高度非特異性結合,并獲得更純凈的蛋白質。IMAC應用中最常用的螯合劑是亞氨基二乙酸酯(IDA)或氮基三乙酸(NTA)。這些螯合劑不能與還原劑如DTT(二硫蘇糖醇),β-meβ-巰基乙醇)和TCEP(三(2-羧乙基)膦)一起使用,因為還原劑可以從這些樹脂中剝離金屬,導致蛋白質結合能力的快速喪失。

此外,這些螯合劑主要固定在傳統的親和色譜基質上,如瓊脂糖樹脂或色譜柱。這些固體基質使純化過程繁瑣,耗時,無法處理非常微小的樣品,并且難以適應自動化系統。Bioclone推出了一種功能強大的基于磁珠的IMAC系統來解決這些問題。

 

參考文獻

1.Jansen, J-C. (Editor). (2011). Protein Purification: Principles, High-Resolution Methods, and Applications. 3rd edition. Volume 151 of Methods of Biochemical Analysis. John Wiley & Sons, Hoboken, NJ

2.Bornhorst, J.A. and Falke, J.J. (2000). Purification of Proteins Using Polyhistidine Affinity Tags. Methods Enzymol. 326: 245-254.

3.Spriestersbach A, Kubicek J, Sch?fer F, Block H, Maertens B. Purification of His-Tagged Proteins. Methods Enzymol. 2015;559:1-15. doi: 10.1016/bs.mie.2014.11.003. Epub 2015 May 4. PMID: 26096499.

4.Zhang C, Fredericks D, Longford D, Campi E, Sawford T, Hearn MT. Changed loading conditions and lysate composition improve the purity of tagged recombinant proteins with tacn-based IMAC adsorbents. Biotechnol J. 2015 Mar;10(3):480-9. doi: 10.1002/biot.201400463. Epub 2014 Oct 31. PMID: 25303209.

5.Pina AS, et al. (2014) Affinity tags in protein purification and peptide enrichment: An overview. Methods in molecular biology (Clifton, N.J.) 1129: 147-168.

6.Young CL, et al. (2012) Recombinant protein expression and purification: A comprehensive review of affinity tags and microbial applications. Biotechnol J 7(5): 620-634.

 

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